アリールジアルキルホスファターゼとは? わかりやすく解説

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アリールジアルキルホスファターゼ

出典: フリー百科事典『ウィキペディア(Wikipedia)』 (2020/06/10 14:33 UTC 版)

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アリールジアルキルホスファターゼ
識別子
EC番号 3.1.8.1
CAS登録番号 117698-12-1
データベース
IntEnz IntEnz view
BRENDA英語版 BRENDA entry
ExPASy NiceZyme view
KEGG KEGG entry
MetaCyc metabolic pathway
PRIAM profile
PDB構造 RCSB PDB PDBj PDBe PDBsum
遺伝子オントロジー AmiGO / EGO
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アリールジアルキルホスファターゼ(Aryldialkylphosphatase、EC 3.1.8.1)は、 有機リン系殺虫剤のリン酸トリエステルの加水分解触媒する酵素であり、金属タンパク質である[1]ホスホトリエステラーゼ(phosphotriesterase、PTE)、有機リン加水分解酵素(organophosphorus hydrolase)、パラチオン加水分解酵素(parathion hydrolase)、パラオキソナーゼ(paraoxonase)、パラチオンアリールエステラーゼ(parathion aryl esterase)などの名称でも知られる。

アリールジアルキルリン酸 + 水
パラオキソンからジエチルリン酸とp-ニトロフェノールへの酵素触媒による加水分解の反応スキーム。

触媒

有機リンに対する触媒は、基質のリン中心に関して配置の反転を伴う求核置換反応SN2機構)を介して行われる[7]。活性部位では、金属カチオンが基質のP-O結合をさらに分極化し、求核攻撃に対する感受性を高めることで触媒を補助している。さらに、塩基性残基が水分子からプロトンを引き抜き、その結果形成された水酸化物イオン(OH-)が2つの2価カチオンを橋渡しし、求核剤として機能する。その後、OH-は基質のリン中心を攻撃し、続いてプロトン移動が起こる。P-O結合は切断され、反応産物が活性部位から放出される[9]。ホスホトリエステラーゼの反応回転数kcat)は、パラオキソンの加水分解の場合ほぼ 104 /sであり、その反応産物はジエチルリン酸とp-ニトロフェノールである。

速度論

提唱されている反応速度論に関するモデルでは、酵素(E)と基質(S)の間で起こる可逆的な結合段階が含まれ、ミカエリス複合体(ES)が形成される。続いて不可逆的段階が起こり、P-O結合が切断されて一過的な酵素-反応産物複合体(EP)が形成される。最後に、反応産物(P)が放出されて酵素(E)が再生される[9]

グラム陰性菌(シュードモナスなど)の細胞壁の模式図。PTEが固定されている内膜とペリプラズムが示されている。

細胞内局在

ホスホトリエステラーゼは膜結合タンパク質であり、29アミノ酸の標的化ペプチド(Tatモチーフ)が付加された状態で翻訳される[10][11][12]細胞膜へ挿入された後、モチーフは成熟タンパク質から切除される[1]。タンパク質は内膜に固定され、ペリプラズム側を向いている[13]

機能

ホスホトリエステラーゼは、基質中のトリエステル結合を切断することで、有機リン化合物を加水分解する。

PTEによる酵素触媒加水分解の基質となる有機リン化合物

この酵素は非常に広い基質特異性を持ち[11]、反応の触媒は非常に効率的である。PTEはパラオキソンを拡散律速に近い速度で加水分解し[14]、このことは酵素がこの基質の利用を最適化するよう進化したことを示唆している[12]。PTEは合成有機リントリエステルとモノフルオロリン酸英語版化合物に特異的に作用する[3]。天然の基質は存在しないようであり、パラオキソンや他の一般的な農業用殺虫剤の利用に最適化した進化を行った可能性がある[14]

パラオキソンに対する反応の産物はジエチルリン酸とp-ニトロフェノールである[4]p-ニトロフェノールは、 opd遺伝子の750塩基対下流にコードされる酵素によってさらに分解される。この酵素は 29 kDa加水分解酵素であると推定されており、芳香族化合物を分解し、PTEと協働的に機能する[4]。この酵素はPseudomonas putidaPseudomonas azelaicaRhodococcus sp.、P. fluorescensに存在する加水分解酵素と相同である[4]

有機リン化合物は細菌に対する毒性はないが、動物に対してはアセチルコリンエステラーゼ阻害剤として機能する[15]。一部の細菌種は有機リンを栄養源や炭素源として利用することができる[13]

環境に対する重要性

ホスホトリエステラーゼは、バイオレメディエーションのための強力な生体触媒の候補であると見なされている[7]。その広い基質特異性と触媒効率のため、opd遺伝子を含む微生物は農薬の過剰使用のために有毒となった土壌の無毒化に利用できる可能性のある魅力的な標的となっている[3]。有機リンはアセチルコリンエステラーゼ阻害剤として機能する。アセチルコリン神経伝達物質であり、昆虫や哺乳類の中枢神経系の必須の構成要素である。アセチルコリンの適切な代謝回転の阻害によって中枢神経系は過剰興奮し、最終的には死に至る[3][16]。有機リン分解微生物は、こうした毒性化合物を環境中から除去するための、効率的で、安価で、環境に優しい手法として利用できる可能性がある[3]

出典

  1. ^ a b “Expression and subcellular localization of organophosphate hydrolase in acephate-degrading Pseudomonas sp. strain Ind01 and its use as a potential biocatalyst for elimination of organophosphate insecticides”. Letters in Applied Microbiology 57 (1): 63–8. (July 2013). doi:10.1111/lam.12080. PMID 23574004. 
  2. ^ a b c “Dissimilar plasmids isolated from Pseudomonas diminuta MG and a Flavobacterium sp. (ATCC 27551) contain identical opd genes”. Applied and Environmental Microbiology 54 (10): 2586–9. (October 1988). PMC: 204325. PMID 3202637. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC204325/. 
  3. ^ a b c d e f g h i “Organophosphorus-degrading bacteria: ecology and industrial applications”. Nature Reviews. Microbiology 7 (2): 156–64. (February 2009). doi:10.1038/nrmicro2050. PMID 19098922. 
  4. ^ a b c d e f g “Transposon-like organization of the plasmid-borne organophosphate degradation (opd) gene cluster found in Flavobacterium sp”. Applied and Environmental Microbiology 69 (5): 2533–9. (May 2003). doi:10.1128/AEM.69.5.2533-2539.2003. PMC: 154515. PMID 12732518. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC154515/. 
  5. ^ “A Flavobacterium sp. that degrades diazinon and parathion”. Canadian Journal of Microbiology 19 (7): 873–5. (July 1973). doi:10.1139/m73-138. PMID 4727806. 
  6. ^ “The genome of Sulfolobus acidocaldarius, a model organism of the Crenarchaeota”. Journal of Bacteriology 187 (14): 4992–9. (July 2005). doi:10.1128/JB.187.14.4992-4999.2005. PMC: 1169522. PMID 15995215. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC1169522/. 
  7. ^ a b c d “Three-dimensional structure of phosphotriesterase: an enzyme capable of detoxifying organophosphate nerve agents”. Biochemistry 33 (50): 15001–7. (December 1994). doi:10.1021/bi00254a008. PMID 7999757. 
  8. ^ “Crystal structure of methyl parathion hydrolase from Pseudomonas sp. WBC-3”. Journal of Molecular Biology 353 (3): 655–63. (October 2005). doi:10.1016/j.jmb.2005.08.057. PMID 16181636. 
  9. ^ a b “Mechanism for the hydrolysis of organophosphates by the bacterial phosphotriesterase”. Biochemistry 43 (19): 5707–15. (May 2004). doi:10.1021/bi0497805. PMID 15134445. 
  10. ^ “Purification and characterization of three parathion hydrolases from gram-negative bacterial strains”. Applied and Environmental Microbiology 55 (2): 289–93. (February 1989). PMC: 184103. PMID 2541658. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC184103/. 
  11. ^ a b Classen, John J.; Engler, Cady R.; Kenerley, Charles M.; Whittaker, A. Dale (April 2000). “A logistic model of subsurface fungal growth with application to bioremediation”. Journal of Environmental Science and Health, Part A 35 (4): 465–488. doi:10.1080/10934520009376982. 
  12. ^ a b Caldwell, S. R.; Newcomb, J. R.; Schlecht, K. A.; Raushel, F. M. (1991-07-30). “Limits of diffusion in the hydrolysis of substrates by the phosphotriesterase from Pseudomonas diminuta”. Biochemistry 30 (30): 7438–7444. doi:10.1021/bi00244a010. ISSN 0006-2960. PMID 1649628. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/1649628. 
  13. ^ a b “Microbial degradation of organophosphorus compounds”. FEMS Microbiology Reviews 30 (3): 428–71. (May 2006). doi:10.1111/j.1574-6976.2006.00018.x. PMID 16594965. 
  14. ^ a b “Purification and properties of the phosphotriesterase from Pseudomonas diminuta”. The Journal of Biological Chemistry 264 (33): 19659–65. (November 1989). PMID 2555328. 
  15. ^ Lotti, Marcello (2002-12-27). “Promotion of organophosphate induced delayed polyneuropathy by certain esterase inhibitors”. Toxicology 181-182: 245–248. doi:10.1016/s0300-483x(02)00291-3. ISSN 0300-483X. PMID 12505319. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/12505319. 
  16. ^ Ragnarsdottir, K. V. (2000). “Environmental fate and toxicology of organophosphate pesticides”. Journal of the Geological Society 157 (4): 859–876. doi:10.1144/jgs.157.4.859. 

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